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无菌技术的实训心得体会

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无菌技术是指在医疗、护理操作过程中,保持无菌物品、无菌区域不被污染,防止病原微生物侵入人体的一系列操作技术和管理方法,是预防感染的一项重要而基础的技术。下面就是小编带来的无菌技术的实训心得体会,希望能帮助大家!

无菌技术的实训心得体会1

1.在开始实验前要制定好实验计划和操作程序。有关数据的计算要事先做好。根据实验要求,准备各种所需器材和物品、清点无误后将其放于操作场所(培养室、超净台)内,然后开始消毒,以避免往返拿取造成污染机率增大。

超净工作台台面每次实验前用75%酒精擦拭,按照顶板→侧壁→器械→挡风玻璃→操作台面的顺序对超净台内部进行彻底的消毒。然后开启超净台和无菌培养室的紫外灯照射30min,关闭紫外,启动风机运转15分钟后,方可开始实验操作。在工作台面消毒时切勿将培养细胞和培养用液同时照射紫外线。

2.无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞,必要物品,例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置,其它实验用品用完即应移出,以利于气流流通。实验用品以75 %酒精擦拭后放入无菌操作台内。实验操作应在台面中央的无菌区域,勿在边缘之非无菌区域操作。

3.小心取用无菌实验物品,避免造成污染。勿碰触吸管尖端或容器瓶口,思想汇报范文亦不要在开口容器的正上方操作。容器打开后,以手夹住瓶盖并握住瓶身,倾斜约45°角取用。

4.操作人员应注意自身安全,须穿戴实验衣及手套后才进行实验。对于来自人类或是病毒感染之细胞株应特别小心操作,并选择适当等级的无菌操作台。操作过程中,应避免引起气溶胶的产生,小心毒性药品,例如DMSO,并避免尖锐针头的伤害等。

5.每次操作只处理一株细胞株,且即使培养基相同也不共享培养基,以避免失误混淆或细胞间污染。为拿取方便,工作台面上的用品要有合理的布局,原则上应是右手使用的东西放置在右侧,左手用品在左侧,酒精灯置于中央。工作由始至终要保持一定顺序性,组织或细胞在未做处理之前,勿过早暴露在空气中。同样,培养液在未用前,不要过早开瓶;用过之后如不再重复使用,应立即封闭瓶口。

6.实验完毕后,关闭超净台风机,以75 %酒精擦拭操作台面及其他实验物品,将多余的物品拿出超净台,打开风机运转15min,关闭风机并打开紫外灯照射30min。

7.定期检测CO2 钢瓶的CO2 压力;CO2 培养箱的CO2范文参考网浓度、温度、水盘是否有污染(水盘的水为无菌水,每周更换);定期更换紫外线灯管及HEPA 过滤膜,预滤网(300小时/预滤网,3000 小时/HEPA)。

预防是防止细胞培养过程中发生污染的最好办法。只有预防工作做在前,才能将发生污染的可能性降到最小程度。

一般预防可从以下几方面着手:

1、添加抗生素

2、从物品、用品消毒灭菌着手

(1)细胞培养所用物品清洗、消毒要彻底,各种溶液灭菌除菌要仔细,并在无菌试验阴性后才能使用。

(2)操作室及剩余的无菌器材要定期清洁消毒灭菌。

3、从操作者做起

(1)进无菌室前要用肥皂洗手,按规定穿隔离衣。工作开始要先用75%酒精棉球擦手、擦瓶口和烧灼瓶口。

(2)操作者动作要轻,必须在火焰周围无菌区内打开瓶口,并将瓶口转动烧灼。操作时尽量不要谈话,若打喷嚏或咳嗽应转向背面。

(3)操作时要常更换吸管,一旦发现吸管口接触了手和其他污染物品应弃去。实验完毕用消毒水浸泡的纱布擦台面。

4、防止细胞交叉污染

(1)在进行多种细胞培养操作时,所用器具要严格区分。范文写作吸取营养液、PBS、细胞悬液

及其它各种用液时,均应分别使用吸管,不能混用,以防扩大污染或导致细胞交叉污染。

(2)在进行换液或传代操作时,手或注射器、滴管等不能经过开口瓶口上方,不能触及瓶口,以免把细胞带到培养液中污染其他细胞。加液时如吸管尖碰到瓶口,则应将吸管丢掉。

(3)细胞一旦购置或从别处引入,均应及早留种冻存,一旦发生污染可重新复苏培养。

5、无菌室的彻底消毒

(1) 0.1%新洁尔灭全面彻底擦洗无菌室;

(2)甲醛熏蒸法:甲醛是一种广谱灭菌剂菌,其水溶液和气休对各种细菌、芽孢及真菌等微生物均有杀灭作用。

容器破碎及感染性物质的溢出的处理:

1 小玻璃瓶及其他容器等被传染性物质污染的破碎物品,以及培养物等溅洒的传染性物质,应当立即佩戴手套用布或纸巾覆盖。

2 在上面倒上消毒剂,并使其作用适当时间。

3 清理破碎物品及污染物,再用消毒剂擦拭污染区域。

4 用于清理的布等应当放在盛放污染性废弃物的容器内。

5 如果实验表格或其他材料被污染,在妥善转抄或拷贝后,应当将其弃入污染废弃物容器。

无菌技术的实训心得体会2

24种器械名称及用途 一、手术刀:由刀片和刀柄组成

用来切开组织和解剖组织,可根据手术部位和性质的不同而更换大小不同的刀片,据需要采用不同的执刀方式:抓持式、执笔式、执弓式、反挑式。 二、手术剪:分为组织剪和线剪

组织剪用以分离,解剖和剪开组织;线剪用来剪断缝线,剪开敷料和引流管等。 三、血管钳

主要用于钳夹血管或出血点,以达到止血的目的,也用于分离组织,牵引缝线,夹持和拔出缝针等。

组织钳:用于牵拉阑尾等不易滑脱,不易损伤组织。

巾钳:固定布巾用。

敷料钳:夹持敷料 四、持针器

用来夹持缝针缝合,也可用于拔针和打结。 五、手术钳

分有齿和无齿两种,用于夹持、提起组织以便于剥离、剪开或缝合。无齿镊用于夹持脆弱组织如血管、神经和黏膜等。有齿镊用于夹持筋膜、肌腱等韧带组织。 六、拉钩

分手持和自动两类。手持的又分皮肤拉钩、甲状腺拉钩、阑尾拉钩、S形拉钩。

用于牵拉开手术表面的组织,充分暴露操作部位,以便进行手术。甲状腺拉钩用于较浅部位牵拉暴露,主要用于甲状腺手术中。阑尾拉钩用于较小的腹部切口如阑尾。S形拉钩用于腹部深部手术。自动拉钩用于盆腔、腹部手术,可自行固定牵开。 七、吸引器

用于吸取胃肠道内容物,胸腹腔及脓肿内液体内液体等,血液。 八、缝针

用于缝合各种组织几贯穿缝扎,分为圆针和三角针。

圆针用于缝合一般软组织如胃肠道,血管和筋膜等。三角针让用于缝合皮肤及软骨等。 九、缝线

分为不吸收和可吸收两类。不吸收的如丝线,可吸收的如肠线。用于缝合组织或结扎血管等,肠线仅用于不应留有异物的伤口。

1

实习二 打结法 实习日期:3月14日

一、各种打结法

临床上结的种类:方结、三重结、外科结、张力结,其中方结用得最多。 打结方法分单手打结法、双手打结法和持钳打结法。

1.方结:结扎较牢固,为外科手术中最常使用的结扣,由两个旋转方向相反的单结重叠而成,适用于较少的组织和较小的血管以及各种缝合的结扎。

无菌技术的实训心得体会3

【目的要求】

1. 认识无菌术在外科手术中的重要性。

2. 熟练掌握外科无菌操作的原则和方法。

【学时安排】 4学时

【教材与参考书】

1. 吴在德主编外科学第六版(人民卫生出版社)

2. 吴在德主编外科实习医师手册第三版(人民卫生出版社)

3. 郭晓惠主编临床医师实践技能考试(北京大学出版社)

【实验教具】

1. 无菌毛刷、肥皂或肥皂水,酒精或新洁尔灭的泡手桶,无菌小毛巾。

2. 干手套,消毒手术衣,消毒液,消毒器械,各种手术铺巾、模型。

【实验方法】

1. 带教老师讲解和示范。

2. 学生在老师的指导下进行操作练习。

【实验内容】

第一部分 手术人员术前准备

一、 传统的肥皂水洗手法:

1. 做好洗手的准备——手术人员换上手术室准备的清洁衣裤和鞋子。剪短指甲,去除积垢。手部、前臂有破损或感染时不能参加手术。

2. 先用肥皂作一般洗手,再用无菌刷蘸肥皂水刷洗手和臂部,从指尖到肘上l0cm处,两臂分段交替刷洗。

3. 同样的方法和顺序共进行三次洗刷,每洗一遍约需3分钟,三次共需约10分钟。

4. 取无菌小毛巾擦干两手、前臂、肘关节和部分洗刷过的上臂,注意对摺毛巾的技巧和擦干顺序。

5. 将双手,前臂和肘部浸泡在70%的酒精桶内5分钟或1:1000新洁尔灭(浸泡5分钟),或1:2000洗必泰(浸泡3分钟),浸泡范围应达肘上6cm处。

6. 浸泡好的双手必须上举,不可下垂,保持双手上举,作拱手姿势。

二、新型灭菌剂的刷手法:

1. 碘尔康刷手法的操作技巧:

2. 灭菌王刷手法的操作技巧:

3. 目前应用的消毒液品种很多,还有如活力碘、碘伏等,使用方法基本相同。

三、穿消毒手术衣

1. 取出消毒手术衣,提住衣领二角并轻轻抛起,两手迅速插入袖管,两臂前伸,让巡回人员帮助穿上。

2. 向前稍弯腰,使腰带悬空,两手交叉,提取腰带向后递,由巡迥护士在身后将腰带系紧。

无菌技术的实训心得体会4

[目的]

1、保持无菌物品及无菌区域不被污染。

2、防止病原微生物侵入或传播给他人,防止交叉感染。

〔评估〕

1、操作项目、目的。

2、操作环境是否整洁、宽敞、安静。

3、无菌物品的存放是否合理,有无过期。

〔计划〕

目标/评价标准:

⑴患者明确无菌操作重要性,愿意配合。

⑵无菌物品、无菌区域未被污染。

⑶无交叉感染。

用物准备:

⑴无菌持物钳:常用无菌持物钳有三叉钳、卵圆钳和长、短镊子四件。 ⑵无菌容器:常用的有无菌盒、罐、盘、及储槽等。

⑶无菌包:包内有无菌治疗巾、敷料、器械等。

⑷无菌溶液、启瓶器、弯盘。

⑸无菌橡胶手套。

⑹治疗盘、小手巾、小纸条、签字笔。

〔实施〕

(一)操作步骤:

1、无菌持物钳的使用:用于取用和传递无菌物品。

⑴衣帽整齐、洗手、戴口罩,检查有效日期→将容器盖打开→使钳端闭合垂直取出,使用保持钳断向下→用后闭合钳端,垂直放回容器,浸泡时轴节松开,液体在轴节上2—3CM;并每周更换,使用频率较高,应每天更换一次。

⑵注意事项:A不可在盖孔中取、放持物钳;B不可触及容器上缘及液面上的容器内壁,防止持物钳在空气中暴露过久;C禁忌夹取油纱布,以及用来换药或消毒皮肤。

2、无菌容器的使用:用于盛放无菌物品。

⑴衣帽整齐、洗手、戴口罩,查灭菌日期→取物时,打开容器盖,平移离开容器,内面向上,置于稳妥处或拿在手中,用完后立即盖严→手持无菌容器时,应把住容器底部。

⑵注意事项:A防止盖内面及边缘触及手及任何非无菌区域。

B避免容器内无菌物品在空气中暴露过久。

3、无菌包的使用:

⑴衣帽整齐、洗手戴口罩。A、包扎法:将物品放于包布中央,用包布一角盖住物品左右两角先后盖上,并将角尖向外翻折,盖上最后一角,以“十”字形包扎好,用化学指示胶带贴好。B、开包法:查包的名称、灭菌日期,将无菌包平放在宽敞平坦、清洁、干燥的操作台上,揭开系带,卷刚在包布下,按顺序打开无菌包,用无菌钳夹取所需物品,放在事先准备的无菌区内,如包内物品未用完,按原来的折痕包好,注明开包时间。

无菌技术的实训心得体会5

无菌操作基本技术

1.在开始实验前要制定好实验计划和操作程序。有关数据的计算要事先做好。根据实验要求,准备各种所需器材和物品、清点无误后将其放于操作场所(培养室、超净台)内,然后开始消毒,以避免往返拿取造成污染机率增大。

超净工作台台面每次实验前用75%酒精擦拭,按照顶板→侧壁→器械→挡风玻璃→操作台面的顺序对超净台内部进行彻底的消毒。然后开启超净台和无菌培养室的紫外灯照射30min,关闭紫外,启动风机运转15分钟后,方可开始实验操作。在工作台面消毒时切勿将培养细胞和培养用液同时照射紫外线。

2. 无菌操作工作区域应保持清洁及宽敞,必要物品,例如试管架、吸管吸取器或吸管盒等可以暂时放置,其它实验用品用完即应移出,以利于气流流通。实验用品以75 % 酒精擦拭后放入无菌操作台内。实验操作应在台面中央的无菌区域,勿在边缘之非无菌区域操作。

3. 小心取用无菌实验物品,避免造成污染。勿碰触吸管尖端或容器瓶口,亦不要在开口容器的正上方操作。容器打开后,以手夹住瓶盖并握住瓶身,倾斜约45°角取用。

4. 操作人员应注意自身安全,须穿戴实验衣及手套后才进行实验。对于来自人类或是病毒感染之细胞株应特别小心操作,并选择适当等级的无菌操作台。操作过程中,应避免引起气溶胶的产生,小心毒性药品,例如DMSO,并避免尖锐针头的伤害等。

5. 每次操作只处理一株细胞株,且即使培养基相同也不共享培养基,以避免失误混淆或细胞间污染。为拿取方便,工作台面上的用品要有合理的布局,原则上应是右手使用的东西放置在右侧,左手用品在左侧,酒精灯置于中央。工作由始至终要保持一定顺序性,组织或细胞在未做处理之前,勿过早暴露在空气中。同样,培养液在未用前,不要过早开瓶;用过之后如不再重复使用,应立即封闭瓶口。

6. 实验完毕后,关闭超净台风机,以75 %酒精擦拭操作台面及其他实验物品,将多余的物品拿出超净台,打开风机运转15 min,关闭风机并打开紫外灯照射30min。

7. 定期检测CO2 钢瓶的CO2 压力 ; CO2 培养箱的CO2 浓度、温度、水盘是否有污染(水盘的水为无菌水,每周更换);定期更换紫外线灯管及HEPA 过滤膜,预滤网(300小时/预滤网,3000 小时/HEPA)。

预防是防止细胞培养过程中发生污染的最好办法。只有预防工作做在前,才能将发生污染的可能性降到最小程度。

一般预防可从以下几方面着手:

1、添加抗生素

2、从物品、用品消毒灭菌着手

(1)细胞培养所用物品清洗、消毒要彻底,各种溶液灭菌除菌要仔细,并在无菌试验阴性后才能使用。

(2)操作室及剩余的无菌器材要定期清洁消毒灭菌。

3、从操作者做起

(1)进无菌室前要用肥皂洗手,按规定穿隔离衣。工作开始要先用75%酒精棉球擦手、擦瓶口和烧灼瓶口。

(2)操作者动作要轻,必须在火焰周围无菌区内打开瓶口,并将瓶口转动烧灼。操作时尽量不要谈话,若打喷嚏或咳嗽应转向背面。

(3)操作时要常更换吸管,一旦发现吸管口接触了手和其他污染物品应弃去。实验完毕用消毒水浸泡的纱布擦台面。

4、防止细胞交叉污染

(1)在进行多种细胞培养操作时,所用器具要严格区分。吸取营养液、PBS、细胞悬液

及其它各种用液时,均应分别使用吸管,不能混用,以防扩大污染或导致细胞交叉污染。

(2)在进行换液或传代操作时,手或注射器、滴管等不能经过开口瓶口上方,不能触及瓶口,以免把细胞带到培养液中污染其他细胞。加液时如吸管尖碰到瓶口,则应将吸管丢掉。

(3)细胞一旦购置或从别处引入,均应及早留种冻存,一旦发生污染可重新复苏培养。

5、无菌室的彻底消毒

(1) 0.1%新洁尔灭全面彻底擦洗无菌室;

(2)甲醛熏蒸法:甲醛是一种广谱灭菌剂菌,其水溶液和气休对各种细菌、芽孢及真菌等微生物均有杀灭作用。

容器破碎及感染性物质的溢出的处理:

1 小玻璃瓶及其他容器等被传染性物质污染的破碎物品,以及培养物等溅洒的传染性物质,应当立即佩戴手套用布或纸巾覆盖。

2 在上面倒上消毒剂,并使其作用适当时间。

3 清理破碎物品及污染物,再用消毒剂擦拭污染区域。

4 用于清理的布等应当放在盛放污染性废弃物的容器内。

5 如果实验表格或其他材料被污染,在妥善转抄或拷贝后,应当将其弃入污染废弃物容器。


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